**組化抗原修復(fù)注意事項(xiàng)

經(jīng)甲醛固定的部分組織細(xì)胞，因固定過程中可能會(huì)形成醛鍵或羧甲基而封閉部分抗原決定簇，使**組化標(biāo)記敏感性明顯降低，因此在染色前，有些抗原需進(jìn)行修復(fù)或暴露。 抗原修復(fù)方法可分為化學(xué)方法和物理方法?；瘜W(xué)方法是以酶消化方法，常用胰蛋白酶及胃蛋白酶，配制濃度與消化時(shí)間要適度。常用的物理方法有單純加熱、微波處理和壓加熱。在選用這三種方法時(shí)，浸泡切片的緩沖液的離子強(qiáng)度和pH、加熱的溫度和時(shí)間均影響著抗原修復(fù)效果。

1、pH的應(yīng)用范圍及選擇

抗原修復(fù)液的pH非常重要，有效的抗原修復(fù)pH要比修復(fù)液的化學(xué)成分更重要，同樣的修復(fù)液隨著pH的升染色的強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)，但pH范圍為6.0-10.0。目前大公認(rèn)的好的抗原修復(fù)液是pH6.0的檸檬酸鹽緩沖液和pH8.0的EDTA緩沖液。作為通用修復(fù)液堿性pH的修復(fù)液要比酸性的有效，而對(duì)固定很長(zhǎng)時(shí)間舊的存檔組織，酸性pH的修復(fù)液則于堿性的修復(fù)液。

2、抗原修復(fù)時(shí)應(yīng)選擇溫度

70-90℃的溫度對(duì)未經(jīng)固定的蛋白質(zhì)可發(fā)生變性，但經(jīng)福爾馬林固定的蛋白質(zhì)，溫度必須達(dá)到92℃以上方能使其變性。研究結(jié)果顯示，溫度為92-98℃是合適的，95℃效果好。

3、抗原修復(fù)液必須遵循自然降溫規(guī)律，否則效果不好或達(dá)不到抗原修復(fù)的目的

抗原修復(fù)持續(xù)時(shí)間過后，取出放于室溫中讓其慢慢地降溫，不能為了爭(zhēng)取時(shí)間，強(qiáng)行用冰塊或冷水使其降溫。這是因?yàn)楫?dāng)溫中的抗原蛋白分子鏈脫離了其他的束縛或聯(lián)結(jié)，要有個(gè)自然環(huán)境讓其自然放松下來，隨著溫度的降低，它們會(huì)慢慢地恢復(fù)原來的形態(tài)和構(gòu)型。

4、盡量使用足量的抗原修復(fù)液

應(yīng)用于抗原修復(fù)的液體，定要充足，防止切片干涸。應(yīng)用大量的抗原修復(fù)液時(shí)，由于它的量較大，可延緩液體的沸騰時(shí)間，增加切片受微波輻射的量，對(duì)抗原修復(fù)將達(dá)到徹底。

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